檢測認證人脈交流通訊錄
- 石榴皮鞣素
操作步驟
試管法（改良 Mayer 法）
1、致敏羊紅細胞： 2%綿羊紅細胞加等量稀釋后的溶血素（ 1:2000），混勻，置 37℃水浴 30min。
2、稀釋血清：待測血清 0.2ml，加應用液 3.8ml，稀釋度為 1:20。
3、配制溶血標準管：全溶血管:2%綿羊紅細胞 2ml 加 8ml 蒸餾水，混勻。
50%溶血管:取全溶血管液 2ml 加緩沖液 2ml。
4、按表所示，依次加各成分于試管中，混勻，置 37℃水浴 30min， 第 10 管為非溶血對照：補體 CH50 測定試管法
5、結果測定：取出試管， 2000r/min 離心 10min，對照管應不溶血。肉眼比色，選與 50%溶血標準管相近二管，再用分光光度計測（波長 542nm、 0.5cm 比色杯） OD 值，
確定與標準管最接近者為終點管，然后按下公式計算 CH50 值：
血清補體 CH50（ U/ml） =（ 1/血清用量）×稀釋度。
如第 5 管為終點管，測待測血清中CH50為66.7U/ml。血清補體CH50正常值為50-100U/ml。
石榴皮鞣素
標本要求
1. 血清：
室溫血液自然凝固10-20 分鐘后，離心20 分鐘左右（2000-3000 轉/分）。仔細收集上清。保
存過程中如有沉淀形成，應再次離心。
2. 血漿：
應根據標本的要求選擇EDTA、檸檬酸鈉或肝素作為抗凝劑，混合10-20 分鐘后，離心20
分鐘左右（2000-3000 轉/分）。仔細收集上清。保存過程中如有沉淀形成應再次離心。
3.尿液：
用無菌管收集。離心20 分鐘左右（2000-3000 轉/分）。仔細收集上清。保存過程中如有沉淀
形成，應再次離心。胸腹水、腦脊液參照此實行。
4.細胞培養上清：
檢測分泌性的成份時，用無菌管收集。離心20 分鐘左右（2000-3000 轉/分）。仔細收集上清。
5.培養細胞:
檢測細胞內的成份時，用PBS（PH7.2-7.4）稀釋細胞懸液，細胞濃度達到100 萬/ml 左右。
通過反復凍融或加入組織蛋白萃取試劑，以使細胞破壞并放出細胞內成份。離心20 分鐘左
右（2000-3000 轉/分）。仔細收集上清。保存過程中如有沉淀形成，應再次離心。
6.組織標本:
切割標本后，稱取重量。加入一定量的PBS，PH7.4。用液氮迅速冷凍保存備用。標本融化
后仍然保持2-8℃的溫度。加入一定量的PBS（PH7.4），或組織蛋白萃取試劑, 用手工或勻
漿器將標本勻漿化。離心20 分鐘左右（2000-3000 轉/分）。仔細收集上清。分裝后一份待檢
測，其余冷凍備用。
7.標本采集后盡早進行提取，提取按相關文獻進行，提取后應盡快進行實驗。若不能馬上進
行試驗，可將標本放于-20℃保存，但應避免反復凍融
8.不能檢測含NaN3 的樣品，因NaN3 抑制辣根過氧化物酶的（HRP）活性。
石榴皮鞣素
試驗操作中可能影響結果的原因及其相應的解決辦法
1 選擇試劑 選擇質量優良的檢測試劑，嚴格按照試劑說明書進行操作，操作前將試劑在室溫下平衡至少30分鐘。
2 加樣 可能原因： 1）血清或血漿標本分離不好即進行加樣； 2）手工操作中，加樣板過多造成加樣后放入孵箱前等待時間過長(特別是室內溫度較高時)； 3）加完標本再加酶試劑時酶濺出孔外。解決辦法： 1） 標本為血清：將血液先自然存放1-2小時后，再用3000rmp離心15分鐘；標本為血漿：必須使用含抗凝劑的血液標本收集管，采血后必須立即顛倒采血管混合5-10次，放置一段時間后，3000rpm離心15分鐘；若在幾天內檢測，可放在2-8℃冰箱中，若要貯存，則置于-20℃的低溫冰箱內。 2) 加樣后及時放入孵箱。 3) 加酶試劑后用吸水紙在酶標板表面輕拭吸干。 4) 如果采用AT或其他全自動加樣，最好選擇FAME或其他后處理儀器加酶試劑。 5) 標本較多時，請分批操作。
3 孵育 可能原因： 1) 孵育時未貼封片或加蓋，使標本或稀釋液蒸發，吸附于孔壁，難于清洗徹底； 2) 孵育時間人為延長，導致非特異性結合緊附于反應孔周圍，難以清洗徹底。解決辦法： 1) 貼封片或加蓋； 2) 按說明步驟嚴格控制操作時間。
4 洗板 可能原因： 1) 采用手工洗板,孔與孔之間液體交叉。 2) 采用半自動洗板機洗板時，洗液量不足，導致洗板不徹底；洗板針堵塞，抽吸不完全；洗板不暢，導致洗板效果差。 3) 反應板過多造成洗板等待時間長。 解決辦法： 1) 保證洗液注滿各孔，洗板針暢通，洗完板后最好在吸水紙（選擇干凈、無或少塵的吸水材料）上輕輕拍干； 2) 合理安排，或多用幾臺洗板機。
5 顯色 可能原因： 1) 顯色劑配制后放置時間過長或使用過期顯色劑； 2) 加顯色劑時濺出孔外造成液體回流。解決辦法： 1) 顯色劑盡量在臨用前配制，堅持不用過期顯色劑，肉眼可見淺藍色的TMB顯色劑不用； 2) 加樣時保持顯色劑不外流； 3) A、B液應避免接觸金屬器械。
6 終止 可能原因如加終止液時產生較多氣泡，導致假陽性增加。所以在加終止液時應避免產生氣泡。
7 讀板 如讀板時板底不清潔等。應保證酶標板清潔。
在整個操作過程中保證酶標板不接觸次氯酸；盡可能實現ELISA檢測標準自動化，有效提高檢測質量。在實際操作中，除了選擇優良試劑外，必須嚴格按照操作步驟進行操作，同時做好室內質控、室間質評，以嚴謹的工作作風檢測每一份標本，才能保證檢測質量。
溫馨提示：不可用于臨床治療。
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